Уровень активности ревертазы

Уровень активности ревертазы пропорционален количеству вирусных частиц. Минимальная активность (по числу включенных пикомолей дГТФ на одну вирусную частицу за 1 ч) составила 28,1±4,2Х10^-7 для AMV и 1,1±0,2X10^-7 для Ra — MuLV (Liebes et al., 1976).

Очищенная полимераза AMV служит субстратом в реакции фосфорилирования, катализируемой очищенной протеинкиназой из того же источника (Tsiapalis, 1977). Степень фосфорилирования регулирует активность ревертазы и, очевидно, правильность считывания матрицы.

Обнаружено, что отношение концентраций ревертазы и матрицы влияет как на количество, так и на качество синтезируемого транскрипта.

Ревертаза AMV не способна удалять ошибочно спаренные нуклеотиды и в процессе полимеризации, и в его отсутствии (Battula, Loeb, 1976). Обратная транскриптаза использует ошибочно спаренные инициирующие концы, находящиеся в комплексе с рибо- и дезоксирибополимерными матрицами. Эффективность использования обычных и ошибочно спаренных концов примерно одинакова, так как степень синтеза и величина продуктов, синтезирующихся в этих реакциях, одни и те же.

На основании экспериментальных данных, накопленных за последние годы, можно сформулировать следующие признаки, наличие которых необходимо для доказательства истинной РНК-зависимой ДНК-полимеразной активности.

1. Обратная транскриптаза должна быть ассоциирована с фракцией вирусных частиц с плотностью 1,16 — 1,18 г/мл. Для проявления максимальной активности фермента необходим неионный детергент (для каждого типа вируса существует строго определенная концентрация детергента типа NP-40, необходимая для образования нуклеотидов).
2. Ферментативная активность после обработки вирионов детергентами выявляется в зоне с плотностью 1,22 — 1,24 г/мл, т. е. в зоне, в которой обнаруживается нуклеотид вируса, содержащий фермент и 70S РНК.
3. Ревертаза должна катализировать эндогенный синтез ДНК, чувствительный к РНКазе, поскольку синтез происходит на РНК-матрице.
4. Продукт полимеразной реакции должен (хотя бы частично) представлять собой гибрид ДНК — РНК и гибридизироваться с РНК из тех же вирусных частиц.
5. Очищенная ревертаза из этих частиц (детергенты т высоких концентрациях разрушают нуклеоиды, при этом освобождается ДНК-полимераза) должна использовать синтетические рибо- и дезоксирибополимеры или их гибриды, а также природные экзогенные мРНК в качестве матриц. Ферментативная активность в этом случае обнаруживается в зоне градиента плотности сахарозы 1,1 г/мл.
6. Наиболее специфической матрицей должна быть 70S РНК из онкорнавирусов.
7. 3Н-ДНК-продукт, синтезированный на матрице 70S РНК, должен гибридизироваться с мРНК и не гибридизироваться с гетерологичной РНК.
8. Очищенная ревертаза из онокрнавирусов должна давать определенный ответ на различные синтетические матрицы, например, в присутствии Mg²⁺ предпочитать олиго-дТ: поли-рА в значительно большей степени, чем олиго-дТ: поли-дА.
9. Вирусная очищенная ревертаза должна использовать естественные РНК, РНК — ДНК-гибриды и ДНК в качестве матриц-затравок.

Вместе с тем показано, что существуют онкорнавирусы, которые могут обладать дефектными или «нестандартными» ревертазами. К таким вирусам прежде всего следует отнести вирус лейкоза хомяков (HaLV), обратная транскриптаза которого, с одной стороны, структурно отлична от всех полимераз известных онкорнавирусов, а с другой, не обладает эндогенной активностью.

Ревертаза HaLV не способна транскрибировать не только 60 — 70S РНК HaLV, но глобулиновую 9S РНК. В то же время фермент AMV транскрибирует обе эти матрицы, что указывает на способность 60 — 70S РНК HaLV функционировать в качестве матрицы.

Оказалось, что ревертаза из MSV, выращенного в крысиных клетках линии 78А1, синтезирует лишь односпиральную ДНК, фермент интрацистеральных вирусных частиц А-типа может в основном синтезировать политимлдиновую кислоту, а полимераза онкорнавирусов С-типа из спонтанной лимфосаркомы мышей линии СС57Вг — только ДНК — РНК-гибриды (А. Г. Татосян и др., 1977).

При анализе продуктов реакции в равновесном градиенте Cs₂SО₄ в последнем случае обнаружено, что ДНК-продукт остается в ассоциации с РНК-матрицей в зоне с плотностью 1,66 т/мл и, вероятно, именно этим (т. е. невозможностью расхождения матрицы и продукта) объясняется остановка тюлимеразной реакции.

«Механизмы вирусного онкогенеза»,
А.И.Агеенко