Антигенное родство вирусов

Несмотря на то что штаммы паповавирусов человека RF, GS, DW, MG и ВК выделены в различных районах земли, между вирусами ВК, RF, GS, DW установлено выраженное антигенное родство и менее выраженное с вирусом MG (Wright et al., 1976).

Это антигенное родство подтверждается результатами анализа вирусных полипептидов. Все исследованные вирусы при электрофорезе в полиакриламидном геле имеют идентичный белковый профиль, сходный с профилем белков SV40.

Небольшие различия наблюдаются в белках VP1 и VP3 вирусов MG и SV40. При хроматографии триптических гидролизатов белков VP1 и VP3 получено абсолютно идентичное распределение пептидов в вирусах ВК, GS и DW. Вирусы RF и MG характеризуются отсутствием в их белке VP1 одного пептида и наличием дополнительного пептида.

Вирус RF содержит один дополнительный пептид, а вирус MG — три. Кроме того, в белке VP3 вируса MG нет двух пептидов, присутствующих в вирусах ВК, GS, DW. Показано также, что TSTA-антиген, индуцированный вирусом JC, перекрестно не реагирует с TSTA-антигеном, индуцированным SV (Padgett et al, 1977).

Паповавирусы человека отличаются друг от друга по способности культивироваться в различных клеточных системах. Штаммы PML-1 и PML-2, например, практически идентичны SV40 в клетках человека и размножаются значительно интенсивнее этого вируса.

Вирус ВК в клетках обезьян размножается очень плохо, а для штамма. JC разрешающей клеточной системой, по-видимому, являются только клетки человека. При размножении вируса PML-2 в клетках обезьян спонтанно образуется «утроенный» мутант, не отличающийся по длине генома от SV40 и представляющий собой тройной повтор одного из участков ДНК SV40, содержащего большую часть поздних генов, некоторые ранние гены, инициаторный участок репликации вирусной ДНК и единственный в геноме серотипа PML-2 участок узнавания для рестриктазы Е. coli RI.

Для исследования процесса образования амплифицированных сегментов из ДНК мутанта с помощью этого фермента выделили участок 10,45, имеющий небольшие «липкие» концы, из которого затем, использовав ДНК-лигазу, получили минициркулярную ДНК (мц-ДНК), составляющую около 1/3 длины ДНК PML-2. При заражении клеток обезьян мц-ДНК штаммом PML-2 репликация их не осуществлялась.

Однако при инфицировании клетки одновременно мц-ДНК PML-2 и ДНК SV40 наблюдалось включение 3Н-тими-дина в оба типа ДНК. Следовательно, циркулярные двунитевые сегменты ДНК PML-2, значительно более короткие, чем ДНК SV40, могут реплицироваться in vivo.

В этих же условиях обнаружены синтезированные de novo кольцевые ДНК, содержащие не только 3, но и до 6 — 9 повторов мц-ДНК, что свидетельствует об амплификации таких сегментов in vivo.

При сравнении с помощью ДНК — ДНК-гибридизации 11 фрагментов ДНК PML-2, полученных при обработке ДНК вирионов рестриктазой Н. influenzeae, с ДНК SV40 оказалось, что 9 из них идентичны фрагментам ДНК SV40. По данным гибридизации препараты ДНК1 из вирусов JC и ВК сходны между собой и с ДНК SV40 в одинаковой степени, эти родственные фрагменты локализуются как в поздней, так и в ранней области генома. Степень родства не превышала 50%, и гетерологичные гибриды между ДНК JC и ДНК SV40 или ДНК ВК и ДНК SV40 менее стабильны, чем гомологичные гибриды ДНК ЭУ40ХДНК SV40 при высоких концентрациях формамида.

Это свидетельствует о том, что внутри гомологичных участков имеет место высокая степень разупорядоченности вторичной двунитевой структуры, которая может достигать 15 — 30% пар основания (Osborn et al., 1976).

«Механизмы вирусного онкогенеза»,
А.И.Агеенко